VI Конгрес європейської асоціації діагностів ветеринарних лабораторій, EAVLD, який проходив у місті Севілья (Іспанія) з 24 по 26 жовтня 2022р.

НДЦ біобезпеки та екологічного контролю ресурсів АПК «Biosafety center» прийняв участь у VI Конгресі європейської асоціації діагностів ветеринарних лабораторій, організований EAVLD, який проходив у місті Севілья (Іспанія) з 24 по 26 жовтня 2022р.

Європейська асоціація ветеринарних лабораторних діагностів EAVLD є некомерційною, незалежною асоціацією окремих членів з місією покращення ветеринарії та громадської охорони здоров’я шляхом надання платформи для спілкування між ветеринарними лабораторними діагностами та просування найвищих стандартів якості у європейських лабораторіях.

Співробітники НДЦ «Biosafety center» є постійними членами Європейської асоціації ветеринарних лабораторних діагностів EAVLD з 2016 року, коли вперше прийняли участь у IV Конгресі європейської асоціації діагностів ветеринарних лабораторій, організованому EAVLD, який пройшов у Празі (Чехія).

В цьому році, Дмитро Масюк, Віктор Недзвецький, Андрій Кокарєв та Антон Голда на Конгресі представили стендову доповідь «Зміни епітеліального адгезивного білка є маркером порушення кишкового бар’єру, спричиненого PEDV» та отримали відповідні сертифікати.

 

В ЯКОМУ МАТЕРІАЛІ ПРОВОДЯТЬ ІДЕНТИФІКАЦІЮ ВІРУСУ ІБК?

Збудник інфекційного бронхіту курей вирізняється серед інших вірусних патогенів птиці вираженою мультитропністю, тому для ідентифікації геному вірусу методом ПЛР досліджують органи респіраторної, репродуктивної та імунної систем, а з метою детекції нефропатогенних варіантів – органи видільної системи.

  • Мигдалики сліпої кишки

Найбільш оптимальний матеріал для дослідження, адже вірус виявляється майже у 100% випадків інфікування та зберігається в мигдаликах до 3 тижнів після інокуляції.

  • Тканини трахеї та легень

Детекція різних штамів вірусу в зразках легень та трахеї різниться, тому найкраще досліджувати їх у сукупності

  • Нирки

Досліджують з метою виявлення нефропатогенних штамів

  • Яєчники та яйцепровід

Оптимальний варіант для ідентифікації штамів, що індукують синдром «лінивої несучки»

За більш детальною інформацією звертайтеся до співробітників BIOSAFETY-CENTER, які проконсультують з питань, що вас цікавлять!

ЩО НЕОБХІДНО ДЛЯ ПЛР-ДІАГНОСТИКИ КИШЕЧНИХ ІНФЕКЦІЙ СВИНЕЙ?

Завжди треба пам’ятати, що передбачувана локалізація збудника має вирішальне значення при виборі виду матеріалу для дослідження методом ПЛР! З огляду на це, для зажиттєвої діагностики інфекцій ШКТ свиней необхідно відбирати зразки фекалій або ректальні мазки, а для посмертної – уражені ділянки кишечників із вмістимим та брижові лімфовузли.

Для попередження перехресної контамінації кожен окремий зразок в стерильній ємності із чистою зовнішньою поверхнею вміщують у зип-лок пакет та маркують.

При відборі зразків фекалій або ректальних мазків важливо враховувати, що пробірки з транспортним середовищем можуть як покращити умови транспортування матеріалу, так і звести нанівець подальші дослідження у ПЛР-лабораторії, адже ферменти, що містяться у транспортних середовищах для бактеріологічних досліджень є інгібіторами полімеразної ланцюгової реакції та призводять до отримання хибнонегативних результатів. Тому для відбору матеріалу з метою ПЛР дослідження необхідно використовувати ємності/аплікатори без транспортного середовища або спеціальні для ПЛР діагностики.

Додаткову інформацію можна отримати, звернувшись до спеціалістів BIOSAFETY CENTER, які проконсультують з питань, що вас цікавлять!

Серологічна діагностика найпоширеніших хвороб кролівництва – міксоматозу та вірусної геморагічної хвороби

Biosafety Center постійно рухається до розширення власних діагностичних можливостей, тому раді повідомити, що тепер відтепер у нас можливе проведення діагностики методом ІФА (ELISA) міксоматозу та вірусної геморагічної хвороби кролів.

До цих захворювань сприйнятливі дикі та домашні кролі, незалежно від породи, віку та статі. Вони виникають у будь який час року, але частіше у теплу пору, що пов’язано з наявністю у цей період великої кількості переносників. Захворюваність складає близько 80%, у молодняка – до 100%, характеризуючись дуже високою летальністю, що завдає колосальних економічних втрат.

Оскільки основою профілактики цих захворювань є імунізація тварин, то від правильності її проведення залежить благополуччя господарства. Таким чином, захистити кролепопоголів’я від поширення інфекції у стаді можливо лише завдяки оцінці проведеної імунізації, що допоможе визначити рівень імунного захисту тварин до даних патогенів. Саме тому серологічне дослідження крові методом ІФА є цінним та специфічним інструментом для моніторингу вище зазначених хвороб. А, отже, проведення специфічного контролю імунопрофілактики є більш, ніж виправданим.

Для діагностики міксоматозу та вірусної геморагічної хвороби кролів методом ІФА (ELISA) ми використовуємо високочутливі тест-системи виробництва Ingenasa (Іспанія), завдяки яким можливо:

  • проведення скринінгу (виявлення наявності або відсутності у крові тварин антитіл до збудників міксоматозу та геморагічної хвороби кролів)
  • встановлення титру антитіл
  • визначення імунної відповіді організму тварин після вакцинації.

Також ми можемо виступити в якості незалежної лабораторії з контролю проведення лабораторних досліджень іншими діагностичними установами.

Запрошуємо до співпраці!

Контроль імунізації інфекційного бронхіту (IB) курей методом ІФА

Специфічна імунопрофілактика є основним заходом з боротьби проти ІБК. На сьогоднішній день відомо, що ефективність проведеної імунізації залежить від низки факторів, що призводить до виникнення спалахів ІВ навіть у вакцинованої птиці.

З метою контролю ефективності імунопрофілактики широко застосовують метод імуноферментного аналізу (ІФА/ELISA), який дозволяє визначити титри антитіл до антигенів збудника IB та з’ясувати їх гомогенність. Саме ці показники характеризують якість імунопрофілактичних заходів, а їх систематичний моніторинг дає можливість своєчасно виявити ознаки циркуляції польового вірусу.

BIOSAFETY CENTER проводить серологічне дослідження як сироваток крові так і жовтка яєць з метою виявлення титрів специфічних антитіл до ІВV методом ELISA навіть через тиждень після інфікування або вакцинації.

Більш детальну інформацію, пов’язану з діагностикою IBV можна отримати ознайомившись зі статтею «Інфекційний бронхіт курей: огляд епізоотичної ситуації та сучасні тенденції в діагностиці».